Magnesiumglycerophosphat: Es kann als Nährstoffverstärker für Arzneimittel und Lebensmittelzusatzstoffe verwendet werden.
Physikalische und chemische Eigenschaften von Magnesiumglycerophosphat
Siedepunkt: 488,7ºC bei 760 mmHg
Molekülformel: C3H7MgO6P
Molekulargewicht: 194,363
Flammpunkt: 249,4ºC
Genaue Masse:193.983063
PSA:122.69000
Lagerung bei Raumtemperatur, trocken, verschlossen
Es gibt viele Methoden zur Bestimmung von Glycerin, am häufigsten wird die chemische Methode verwendet. Die Kosten der chemischen Methode sind gering, aber der Vorgang ist kompliziert, die Menge der Reagenzien ist groß, die Zeit ist lang und manchmal ist der Fehler groß. Die enzymatische Bestimmung von Glycerin ist hochspezifisch und reagiert nur spezifisch mit Glycerin in Lösung, aber das erforderliche Reagenz ist teuer, was für die industrielle Anwendung und den Nachweis einer großen Anzahl von Proben nicht förderlich ist. Die empfindlichste Methode zur Bestimmung von freiem Glycerin ist die Gaschromatographie.
Flüssigchromatographie: Hohe Genauigkeit, aber Glycerin muss silanisiert werden, mühsame Handhabung, hohe Kosten. Da die Methode mit hohem Jodgehalt stark durch Verunreinigungen (Zucker und Polyole) in der Fermentationsflüssigkeit beeinflusst wird, ist die Nachweismethode grundsätzlich ungenau, insbesondere wenn der Glyceringehalt in der Fermentation niedrig ist: Hochleistungsflüssigchromatographie ist genau, aber der Arbeitsaufwand für die Vorbehandlung der Fermentationsprobe ist groß und sie ist nicht für die Herstellung einer großen Anzahl von Proben geeignet. Daher ist die Verwendung der Enzymelektrodenmethode zur Bestimmung des Glyceringehalts in der Fermentationsflüssigkeit hochschnell und stark spezifisch, da das immobilisierte Enzym wiederverwendet werden kann, ist eine einzelne Erkennung kostengünstiger als die enzymkolorimetrische Methode.
1.Periodsäure-Methode
Prinzip: Die Periodensäureoxidationsmethode ist derzeit eine gängige Methode zur Bestimmung des Glyceringehalts. Dabei wird eine Periodensäure- und Glycerin-Reoxidationsreaktion verwendet. Die verbleibende Periodensäure und die erzeugte Iodsäure reagieren mit Kaliumiodid, um Iod zu erzeugen. Anschließend erfolgt eine Titration mit Natriumthiosulfat, um den Glyceringehalt entsprechend der verbrauchten Natriumthiosulfatmenge zu berechnen. 2. Die Fermentationsflüssigkeit 1{{10}}m1 wird in einem kleinen 100-ml-Becher mit einer kleinen Menge Wasser gelöst, dann in eine 100-ml-Messflasche umgefüllt, bis zur Markierung mit Wasser verdünnt, gut geschüttelt und stehen gelassen. Mit einer Pipette 10 ml der obigen Lösung genau in die Jodmessflasche geben, 20m Natriumperiodatlösung hinzufügen, gleichmäßig mischen, 40 Minuten im Dunkeln und ohne Licht stehen lassen, dann 15 ml Kaliumjodidlösung und 20%ige Salzsäurelösung hinzufügen, den pH-Wert zwischen 0,8 und 1,0 einstellen und dann mit Natriumthiosulfat-Standardlösung titrieren. Gegen Ende wurde 2 Stärkeindikatorlösung hinzugefügt und titriert, bis die blaue Farbe der Lösung verschwand. Gleichzeitig eine Probenleerprobe durchführen.
2, Enzymkolorimetrie
1. Prinzip: Es handelt sich um eine enzymatische Methode zur Bestimmung von Glycerin, die durch eine spezifische katalytische Reaktion von Enzymen etabliert wurde. Dabei wird Glycerin unter Einwirkung von Glycerinkinase in Glycerinphosphat umgewandelt. Die Umwandlung erfolgt durch Phosphoglycerinoxidase, wodurch Diphosphatacetonphosphat und Wasserstoffperoxid entstehen. Anschließend reagieren Wasserstoffperoxid und Aminopyrin sowie Chlorphenol unter Katalyse der Peroxidase zu violetten und blauen Farben. Das Imin weist einen charakteristischen Absorptionspeak bei etwa 50 m auf. Durch die Farbtiefe, d. h. die Absorptionsänderung, wird der erzeugte H,O-, Glycerin- und H0-Gehalt bestimmt, der proportional zum erzeugten H ist. Daher kann die kolorimetrische Methode zur Bestimmung des Glyceringehalts verwendet werden.
2. Vorgehensweise Wellenlänge: 500 nm (480 ~ 520 nm) Reaktionstemperatur: 37 °C Kolometrischer Becher Lichtdurchmesser: 1 cm Nehmen Sie eine bestimmte Menge R1 (siehe Etikett der R2-Flasche) und geben Sie sie in eine Flasche R2, die nach der Auflösung die Arbeitsflüssigkeit ist. Die Arbeitsflüssigkeit ist auf die Testtemperatur vorisoliert.
3, Hochleistungsflüssigkeitschromatographie
Prinzip: Das Prinzip der Hochleistungsflüssigkeitschromatographie (HPLC) basiert auf der Flüssigkeit als mobiler Phase und der Verwendung eines Hochdruckinfusionssystems. Das einzelne Lösungsmittel mit unterschiedlicher Polarität oder verschiedene Anteile gemischter Lösungsmittel, Puffer und anderer mobiler Phasen werden in die mit einer festen Phase ausgestattete Säule gepumpt. Die Säule wird verwendet, um zuerst die Testmischung zu trennen und dann zu erkennen, um die Analyse der Probe zu erreichen. Daher sind die Genauigkeit und Präzision der Messung hoch und es ist zu einer allgemein verwendeten Methode zum Erkennen biochemischer Moleküle geworden. 2. Verfahren
(1) Zuerst wurde die Fermentationslösung mit Wasser 2,5-fach verdünnt, dann wurde HPO zugegeben, um H bei einer Rotationsgeschwindigkeit von 8000 U/min und einer Temperatur von 4 °C 10 Minuten lang auf 55 einzustellen, und dann für die HPLC-Analyse durch eine mikroporöse Filtrationsmembran gefiltert: (2) Die Glycerin-Standardreihenlösung wurde mittels HPLC unter den besten chromatographischen Bedingungen analysiert, wobei die Methode des externen Standards für die Peakfläche verwendet wurde, um die Glycerin-Standardkurve zu quantifizieren:
(3) Nach der Vorbehandlung der Probe wurden 5 µl injiziert, die Peakfläche aufgezeichnet, in die lineare Gleichung eingesetzt und ihr Messwert berechnet. Der berechnete Wert wurde mit den Verdünnungszeiten multipliziert, um den Glyceringehalt in der Fermentationslösung zu erhalten.
4,Gaschromatographie
1. Prinzip: Gaschromatographie ist eine Methode zum Trennen und Analysieren von Verbindungen in komplexen Proben. Das Prinzip besteht darin, dass eine bestimmte Menge eines gasförmigen oder flüssigen Analyten in die Injektionsöffnung an einem Ende der Säule eingespritzt wird, vom Trägergas durch die Säule getrieben wird und die Moleküle des Analyten von der Säulenwand oder der Füllung in der Säule adsorbiert werden. Da unterschiedliche Proben unterschiedliche physikalische und chemische Eigenschaften aufweisen und unterschiedlich mit bestimmten stationären Phasen interagieren, hat jede Molekülart ihre eigene Durchgangsgeschwindigkeit, sodass verschiedene Komponenten des Analyten das Ende der Säule zu unterschiedlichen Zeiten erreichen und somit getrennt werden. Wenn die Verbindungen aus dem Ende der Säule fließen, werden sie vom Detektor erkannt, der das entsprechende Signal erzeugt, das in ein elektrisches Ausgangssignal umgewandelt wird. Dadurch wird die zeitliche Reihenfolge bestimmt, in der jede Komponente das Ende der Säule erreicht, und die Menge jeder Komponente.
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